Tính kháng sâu, bệnh hại lúa là mục tiêu quan trọng trong chương trình cải tiến giống lúa. Tuy nhiên, tính 
kháng sâu bệnh thường bị phá vỡ sau vài năm giống được đưa ra sản xuất. Chiến lược chồng gen kháng nhờ sự giúp đỡ của Chỉ thị ADN, với nguồn gen được khai thác từ lúa hoang, lúa địa phương đang được khuyến khích. Chúng ta vẫn chưa biết hết những bí ẩn của tương tác giữa ký sinh và ký chủ, sự phá vở tính kháng do sức ép chọn lọc cao
                
              
                                            
                                
            
 
            
                 20 trang
20 trang | 
Chia sẻ: vietpd | Lượt xem: 1857 | Lượt tải: 1 
              
            Bạn đang xem nội dung tài liệu Thiết lập bản đồ gen rầy nâu trên quần thể f2 cây lúa (oryza sativa), để tải tài liệu về máy bạn click vào nút DOWNLOAD ở trên
THIẾT LẬP BẢN ĐỒ GEN RẦY NÂU TRÊN QUẦN 
THỂ F2 CÂY LÚA (ORYZA SATIVA) 
Nguyễn Thị Lang và Bùi Chí Bửu 
Viện Lúa Đồng Băng Sông Cửu Long 
I. MỞ ĐẦU 
 Tính kháng sâu, bệnh hại lúa là mục tiêu quan trọng 
trong chương trình cải tiến giống lúa. Tuy nhiên, tính 
kháng sâu bệnh thường bị phá vỡ sau vài năm giống được 
đưa ra sản xuất. Chiến lược chồng gen kháng nhờ sự giúp 
đỡ của Chỉ thị ADN, với nguồn gen được khai thác từ lúa 
hoang, lúa địa phương đang được khuyến khích. Chúng ta 
vẫn chưa biết hết những bí ẩn của tương tác giữa ký sinh và 
ký chủ, sự phá vở tính kháng do sức ép chọn lọc cao. Thí 
dụ như tính kháng rầy nâu và bệnh đạo ôn được điều khiển 
bởi gen đơn, nhưng sự thể hiện tính kháng này vô cùng 
phức tạp, người ta phải sử dụng thuật ngữ "complex", vì 
tính kháng không ổn định trong điều kiện thâm canh cao và 
chiến lược quản lý giống trong sản xuất không hợp lý, sự 
biến dị trong pathogen hoặc loại hình sinh học (biotype). 
Việc áp dụng các tiến bộ kỹ thuật marker phân tử trong 
chọn giống lúa chống chịu sâu bệnh hại chính đang được 
phát triển. Với sự thuận lợi của những chỉ thị trên cơ sở kỹ 
thuật PCR, chúng ta đã giảm rất nhiều chi phí nghiên cứu 
so với sử dụng RFLP.Tuy nhiên để chọn lựa chỉ thị nào liên 
kết với một gen kháng bệnh, bản đồ di truyền của gen phải 
được thiết lập. 
Lập bản đồ di truyền trên cây lúa bằng chỉ thị phân tử 
 Mc. Couch và ctv (1988) thiết lập bản đồ liên kết gen 
trên cây lúa đầu tiên với RFLP bao gồm 135 loci. Bản đồ 
phủ trên 12 nhiễm sắc thể với chiều dài tổng cộng 1.389 
cM trên hệ gen cây lúa từ cặp lai IR34583 (indica) và Bulu 
Dalam (javanica). 
Ba năm sau đó, bản đồ thứ hai được thiết lập từ quần thể 
IRAT117(japonica) và Apura (indica) (Mc Couch 1991, 
Tanksley và ctv 1991). Một nhóm tác giả khác là Saito và 
ctv (1991) thiết lập một bản đồ di truyền dựa trên cặp lai 
Kasalath (indica) và Fl134 (japonica) với 347 chỉ thị RFLP, 
phủ trên 12 nhiễm sắc thể, với chiều dài tổng cộng 1.836 
cM trên hệ gen cây lúa. 
Causse và ctv (1994) thiết lập một bản đồ khác dùng chỉ thị 
RFLP để xây dựng bản đồ di truyền từ quần thể hồi giao 
(backcross) giữa O.sativa (dạng hình indica) và 
O..longistaminata. Chúng bao gồm những chỉ thị từ hệ gen 
cây lúa với ký hiệu RG và RZ , từ lúa mì với ký hiệu CDO 
và lúa mạch với ký hiệu BCD. Tổng số 600 chỉ thị phủ trên 
12 nhiễm sắc thể. 
Kurata và ctv (1994) dùng quần thể F2 của Nipponbare 
(japonica) và Kasalath (indica) để thiết lập lập bản đồ di 
truyền. Bản đồ được bao phủ trên 12 nhiễm sắc thể với 
tổng cộng chiều dài 1.575 cM. Vịệc thiết lập bản đồ trên 
tâm động (centromere) cũng được thực hiện với 170 chỉ thị 
RFLP (Singh và ctv. 1996). 
Lập bản đồ cho gen rầy nâu 
 Đối với rầy nâu, việc dùng chỉ thị trên cơ sở kỹ thuật 
PCR, để lập bản đồ gen rất phức tạp và khó khăn. Ishii và 
ctv. (1994) đã thiết lập bản đồì RFLP và xác định gen Bph-
10 kháng biotype 2 và 3, định vị trên nhiễm sắc thể 12 liên 
kết với RG457. Cặp primer được thiết kế từ RG457 (chỉ thị 
STS ) đã phát hiện được gen kháng rầy nâu Bph-10 với 
khoảng cách di truyền 1.7 cM trên quần thể lúa hoang 
Oryza australiensis và những dòng con lai có xuất xứ từ 
loài lúa hoang này (Lang và ctv. 1999). Trong báo cáo này, 
chúng tôi muốn trình bày tính khả thi của việc sử dụng vật 
liệu lúa địa phương để xây dựng quần thể con lai, áp dụng 
trong kỹ thuật thiết lập bản đồ liên kết gen với chỉ thị phân 
tử trên cơ sở kỹ thuật PCR, nhằm phát hiện gen kháng rầy 
nâu, kháng bệnh đạo ôn và bạc lá, phục vụ chiến lược MAS 
(chọn giống nhờ chỉ thị phân tử) 
II. VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP 
Quần thể con lai từ những vật liệu sau đây để nghiên cứu 
tính kháng rầy nâu 
Thanh lọc rầy nâu : quần thể con được thử và đánh gía 
kháng rầy nâu 
+ Nguồn rầy nâu thu thập tại Viện Lúa Ô Môn. 
+ Các dụng cụ nuôi rầy và thanh lọc rầy , trong nhà lưới. 
+ Giống lúa mùa Tài nguyên và TN1 được cung cấp làm 
thức ăn cho rầy 
Thanh lọc theo phương pháp hộp mạ của IRRI,ba lần nhắc 
lại, giống TN 1, IR 64 làm chuẩn nhiễm và PTB 33, Hoa 
Lài làm chuẩn kháng. Khi cây mạ ở giai đoạn 2 đến 3 là, 
tiến hành thả rầy tuổi 1 đến 3, mật số 4-6 con / cây. 
Quan sát lúc giống TN 1 cháy rụi (cấp 9), đánh giá cấp hại 
đối với vật liệu thí nghiệm theo thang điểm 9 cấp của IRRI. 
Phương pháp phân tích PCR-based MAS 
Chỉ thị STS theo phương pháp Lang 2002 
Microsatellite: Sản phẩm PCR được chuẩn bị trong 
10mM Tris-HCl (pH 8), 50mM KCl, 1.5mM MgCl2, 1 unit 
của TAKARA Taq, 4 nmol dNTP, 10pmol primer và 50ng 
ADN. Sử dụng thermal cycler 9600 (Perkin-Elmer), chu kỳ 
nhân gen được thiết kế như sau: tách dây đơn ở 95oC trong 
5 phút, tiếp theo đó là 35 chu kỳ: 94oC trong 60 giây, 55oC 
trong 30 giây, 72oC trong 60 giây. Lần kéo dài phản ứng 
cuối là 72oC trong 5 phút. Sau khi thực hiện PCR, chúng tôi 
thêm vào 13l dung dịch đệm (98% formamide, 10mm 
EDTA, 0.025% bromophenol blue, 0.025% xylene cyanol. 
Mức độ đa hình của sản phẩm PCR được phát hiện nhờ 
ethidium bromide sau khi điện di trên 5% agarose gel. 
Microsatellite marker được ghi nhận sự có băng kháng và 
nhiễm theo số 1 (chống chịu mặn) và 2 (nhiễm). 
Thiết lập bản đồ: nhờ phần mềm MAPMARKER version 
3.0 
III.KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU 
IV.1. Xây dựng các tổ hợp lai và quần thể con lai 
Vật liệu bao gồm các giống lúa địa phương cổ truyền, 
giống lúa cải tiến trong chương trình lai, với giống đối 
chứng kháng quốc tế là PTB33 giống chuẩn nhiễm là TN1. 
Sử dụng quần thể F2 của tổ hợp lai IR64 / HOALAI. Thu 
hoạch hai hạt trên mỗi bông của mỗi cá thể F2 để theo dõi 
sự phân ly ở F3. Quần thể F2 của tổ hợp lai 
IR54742/IR31917, PTB33 / TN1 được phân tích kiểu gen 
với chỉ thị STS và quần thể ì F2 của IR 64 / Hoa Lài được 
phân tích với microsatellite marker. 
Rầy nâu dung chỉ thị STS 
 Quần thể F2 của tổ hợp lai ì PTB33 / TN1 được phân 
tích kiểu gen với chỉ thị STS 
Bản đồ liên kết gen RFLP đã đánh dấu gen Bph-10 với chỉ 
thị RG457 trên nhiễm sắc thể 12 (Ishi và 1994). Sau đó, 
một loạt các cặp primer đã được thiết kế để sử dụng PCR 
trong việc tìm kiếm gen kháng ở quần thể con lai (Lang và 
ctv.1999). Giống PTB33 có nguồn gốc từ ấn Độ, kháng rầy 
nâu biotype 2 và 3. Giống TN1 nhiễm rất nặng đối với tất 
cả biotype của rầy nâu được biết.(hình 1) 
 Kết qủa đánh giá kiểu hình cóí 12 / 50 cây kháng, 11/50 
cây nhiễm và 27/50 cây kháng trung bình, theo tỉ lệ phân ly 
Mendel ở F2 là 1:2:1 
Hình 1 Đánh giá kiểu hình trên hộp mạ rầy nâu, bố, mẹ và 
con lai F2 
Kết quả phân tích kiểu gen nhờ chỉ thị STS thể hiện ở hình 
2 
Hình 2: Kết qủa PCR với primer RG457L-L được thiết kế 
từ RG 457 nhằm phát hiện gen Bph-10 
A: tổ hợp IR54742/IR31917 và quần thể F2 , với primer 
RG457L-L , đường 1: giống nhiễm IR31917 với 2 băng, 
đường 2: giống kháng IR54742 với 3 băng, đường 3 đến 
21: con lai F2, đường 8 và 17, con lai dị hợp tử, đường 10: 
con lai đồng hợp tử kháng 
B: tổ hợp PTB33/TN1 và quần thể F2 , với primer 
RG457B-L, đường 1 giống nhiễm TN1 với 2 băng, đường 
2: giống kháng PTB33 với 2 băng, đường 3 đến 22: con lai 
F2, đường 9-16: con lai dị hợp tử, đường 17 đến 21: con lai 
đồng hợp tử mang gen kháng rầy nâu 
Dự đoán mức độ chính xác trong phân tích genom được 
trình bày trong bảng 3. Số cây kháng rầy nâu đồng hợp tử 
trội có gía trị ước đoán là 72,27%, cây dị hợp tử là 85,70%, 
và cây nhiễm đồng hợp tử lặn là 85,70%, với tổ hợp PTB33 
/ TN1. 
 Trong khi đó, quần thể con lai F2 của IR54742 / 
IR31917 cho mức độ chính xác cây kháng 100%, cây 
nhiễm 100% và cây dị hợp tử 95% (Lang và ctv.1999). 
 Điều nầy cho phép giải thích đối với quần thể rầy nâu 
phân lập có 3 biotype. Có giống nhiễm với botype 1 nhưng 
lại kháng với biotype 2 hoặc ngược lại 
Bảng 2: Gíá trị ước đoán chính xác thông qua so sánh giữa 
kiểu gen và kiểu hình, quần thể F2 của PTB33 / TN1 
Ly trích ADN của hệ gen PTB33,TN1, IR65482-4-136-2-4, 
ASD7, OM1570, Oryza autraliensis, để đánh giá dạng đa 
hình trên quần thể rầy nâu với chỉ thị RG457L-L. Tuy 
nhiên, kết qủa điện di đầu tiên cho thấy các kiểu gen kháng 
và nhiễm có khoảng cách quá gần không nhìn rõ. Chúng tôi 
dùng enzyme HinfI để phân cắt sản phẩm PCR này, kết qủa 
sau cùng cho thể đa hình rất đẹp ( Hình 3) 
Hình 3:Genomic của các giống 1:PTB33,2:TN1, 
3:IR65482-4-136-2-4,4: ASD7,5: ọM 1570, 6:O. 
autraliensis .Sản phẩm PCR được dùng chỉ thị RG457B-L 
,chạy trên điện di với nồng độ agarose 1,2% 
A: Sản phẩm PCR chạy trên điện di , trước khi phân cắt 
B: Sau khi phân cắt với HinfI 
Áp dụng chỉ thị STS này, con lai F2 cũng được tiến hành 
tiến hành điện di, sau khi đánh giá kiểu hình trên hộp mạ 
rầy nâu. Hình 3 cho thấy con lai có kiểu gen đồng hợp tử 
kháng, dị hợp tử, và đồng hợp tử nhiễm. 
Hình 4: Phân tích kiểu gen của con lai ở F2 
 A: PCR của tổ hợp IR54742 / IR31917 và quần thể F2 , với 
primer RG457L-L 
Phân cắt với HinfI. Lane 1 : IR31917(nhiễm) ; Lane 
2:IR54742 (kháng). Lane 3-21 con lai F2. Lane 8: dị hợp tử. 
Lane 10: đồng hợp tử kháng 
B: PCR của tổ hợp PTB33 / TN1 và quần thể F2 , với 
primer RG457B-L 
Phân cắt với HinfI. Lane 1 : TN1 (nhiễm); Lane 2:PTB33 
(kháng). Lane 3-21 con lai F2. Lane 3-8: đồng hợp tử 
nhiễm, Lane 9-16: dị hợp tử, Lane 17-21: đồng hợp tử 
kháng 
Lang và ctv. (1999) đã sử dụng STS để phân tích sự du 
nhập gen lháng rầy nâu từ loài hoang dại Oryza 
australiensis vào giống lúa trồng Oryza sativa L. 
(IR31917-45-3-2). Hai dòng IR65482-4-136 và IR65482-
17-511 là kết qủa của cặp lai giữa lúa hoang với lúa trồng 
theo cách này được ghi nhận kháng với rầy nâu biotype 2 
và 3. Đa hình được ghi nhận trong cặp primer 
RG457FL/RL, với kiểu gen kháng có kích thước 300, 250, 
200 bp, và kiểu gen nhiễm là 500, 200 bp. Trong cặp 
primer RG457FL/BL, kiểu gen kháng có kích thước 500, 
300 bp, và kiểu gen nhiễm là 550, 200 bp. Chỉ thị này có 
giá trị liên kết với gen kháng Bph-10 là 1,7 cM. 
 Xây dựng bản đồ liên kết gen kháng rầy nâu với 
microsatellite marker trên quần thể IR 64 / Hoa Lài (hình 2 
với 229 cá thể con lai F2, cho thấy: chỉ có 118 / 300 primer 
đựoc ghi nhận thể hiện đa hình, phủ trên 12 nhiễm sắc thể 
với chiều dài tổng cộng là 1.298,007 cM. Gen kháng rầy 
nâu của vật liệu cho (giống Hoa Lài) được tìm thấy trên 
nhiễm sắc thể số 12, giá trị liên kết rất chặt là 0,2 cM với 
chỉ thị RM227 và 5,0 cM với chỉ thị RM260. Điều này 
cũng cho thấy nó định vị rất gần với chỉ thị RG457, xét 
theo bản đồ RFLP (hình 5) 
Hình 5 : Bản đồ di truyền gen kháng rầy nâu của IR 64/ 
Hoa Lài trên nhiễm sắc thể số 12 
Bảng 3 cho thấy giá trị ước đoán mức độ chính xác trong 
sử dụng phương pháp MAS để tìm gen kháng rầy nâu trong 
quần thể IR64/Hoa Lài. Giá trị này có thể tin tưởng được so 
với tổ hợp PTB33/TN1 
Bảng 3. Gíá trị ước đoán chính xác thông qua so sánh giữa 
kiểu gen và kiểu hình, quần thể F2 của IR64 / Hoa Lài 
IV. KếT LUậN 
 Chọn giống nhờ chỉ thị phân tử (MAS) là một chiến 
lược có thể áp dụng ở Việt Nam với hiệu qủa chọn lọc tốt, 
thông qua kỹ thuật :fine mapping" với chỉ thị STS và 
microsatellite, đối với rầy nâu. 
 Quần thể RIL và f2 có thể được khuyến cáo dùng trong 
sự phát triển các dòng chỉ thị với chỉ thị tương ứng. ở đây, 
chúng tôi tập trung các quần thể: IR 64/Hoa Lài, PTB33 
/TN1, 
 Gen kháng rầy nâu Bph-10 được phát hiện nhờ phương 
pháp sử dụng STS trên locus RG457 ở nhiễm thể số 12, 
trên cơ sở vật liệu của tổ hợp PTB33/TN1, và sử dụng 
microsatellite RM227 trên cơ sở của tổ hợp IR64/Hoa Lài. 
Hai chỉ thị RG457B-L và RG457L-L có thể được khuyến 
cáo để chọn lọc dòng lai kháng rầy nâu (biotype 2 và 3) 
Summary 
GENOTYPING BROWN PLANT HOPPER BY DNA 
MARKERS 
 Marker-assissted selection is recommended as a key 
strategy in terms of detection target genes which control 
brown plant hopper, based on sequence tagged sites (STS) 
and microsatellite markers. Fine mapping is requested to 
have closer linkage between target genes and markers. 
Based on the sequence data of STS, gene Bph-10 in the 
population of PTB 33 / TN1 Gene Bph-10 was also 
detected based on microsatellite marker RM227 in the 
population of IR64 / Hoa Lài. 
TÀI LIỆU THAM KHẢO 
Causse MA, Fulton TM, Cho Y G, Ahn SN, Chunwongse 
J, Wu K, Xiao J, Yu Z, Ronald PC, Harring ton SE, Second 
G, McCouch SR, Tanksley S. . 1994. Saturated molecular 
map of rice genome based on an interspecific backcross 
population. Genetics 138(4): 1251-1271. 
Ishii T, Brar D S, multani D,S Khush GS. 1994. molecular 
tagging of gene for brown planthopper resistance and 
earliness introgressed from O.ryza australiensis into 
cultivaed rice. O. .sativa. Genomie 7:217-221 
Kurata, N., G. Moore, Y.Nagamura, T. Foote, 
M.Yano,Y.Minobe and M.Gale. 1994. A high degree of 
consevation of genome structure between rice and wheat 
Bio/Technology 12:276-278 
Mc Couch ,S.R,. G. Kochert , Z.H. Yu,Z. Wang, G.S. 
Khush, W,R. Coffam and S.D Tanksley .1988. Molecular 
mapping of rice chromosomes .Theor. Apple.Genet. 
76:815-829 
McCouch, S.R., and M.L Abenes , R. Angleges, G.S Khush 
and S.D Tanksley .1991. Molecualr tagging of a recessive 
gene xa-5 for resistance to bacterial blight of rice. Rice 
Genet. Newsl .8:143-145 
Mc Couch , S.R . and Stansley. 1991. Development and use 
restricion fragment length polymorphism in rice breeding 
and genetics p. 109-133. G.S khush and G.H. toenniessen. 
CAB international. Wallingford UK, and International Rice 
Research Institute, Manila Philippine 
McCouch et r. doerge. 1996. QTL mapping in rice . Trends 
in Genet. 11: 482-487 
McCouch SR, SD Tanskley. 1991. Development and use of 
restriction fragment length polymorphism in rice breeing 
and genetics. P. 109-133. in: Rice biotechnology. 
Nematzadeh G.A.1995. Mapping gene for grain quality in 
rice ( Oryza sativa L) using RAPD and RFLP markers. 
UPLB, PH.Dthesis , 99pp 
Nguyễn thị Lang. 1994. Nghiên cứu ưu thế lai của một số 
tính trạng sinh lý và năng suất cây lúa . Luận án tiến sĩ . 
Viện KHKT Nông Nghiệp Việt Nam, Hà Nội 
Nguyen T Lang, Seiji Yanagihara, BC Buu. 2001. A 
microsatellite arker for a gene conferring salt tolerance on 
rice at vegetative and reproductive stages. SABRAO: 1-10 
Nguyen thi Lang, DS Brar, Gurdev S Khush, Ning Huang 
and Bui chi Buu. 1999. Development of STS markers to 
indentify brown plant hopper resistance in a segregating 
population. Omonrice (7) 26-34. 
Nguyễn Thị Lang 2002. Phương pháp cơ bản trong công 
nghệ sinh học 200 trang . Nhà Xuất bản Nông nghiệp 
Singh ek., D.S. multani, and G.S. Khush. 1996 Secondary 
trismics and telotrisomics of rice: Origin, characterization 
and use in determining the orirentation of chromosome 
map. Genetics 143;517-529 
Tanksley ,S.D.N, Ahn, M.causse T. coffman, T. Fulton, 
S.R. Mc.Couch, G. second, T. Tai,Z,.Wang, K.Wu and 
Z.Yu 1991. RFLP mapping of rice genome .pp. 435-442. In 
Rice Genetics II Prco, of the second international Rice 
genetic Symposium. May 1990. IRRI . Philippine. 1991 
Tanksley SD, and J Hewitt.1988. Use of molecular markers 
in breeding for soluble solids content in tomato a re-
examination. Theor. Appl. Genet. 75:811-823. 
Người thẩm định nội dung khoa học: GS. Lê Đình Lương